蛋白質提取的六種方法
一、植物組織蛋白質提取方法
1、根據樣品重量(1g 樣品加入 3.5ml 提取液,可根據材料不同適當加入),準備提取液放在冰上。
2、把樣品放在研缽中用液氮研磨,研磨后加入提取液中在冰上靜置(3-4 小時)。
3、用離心機離心 8000rpm40min4℃或 11100rpm20min4℃
4、提取上清夜,樣品制備完成。蛋白質提取液:300ml
1、1Mtris-HCl(PH8) 45ml
2、甘油(Glycerol)75ml
3、聚乙烯吡咯烷酮(Polyvinylpolypyrrordone)6g
這種方法針對 SDS-PAGE,垂直板電泳!
二、植物組織蛋白質提取方法三氯醋酸—丙酮沉淀法
1、在液氮中研磨葉片
2、加入樣品體積 3 倍的提取液在-20℃的條件下過夜,然后離心(4℃8000rpm以上 1 小時)棄上清。
3、加入等體積的冰浴丙酮(含 0.07%的β-巰基乙醇),搖勻后離心(4℃8000rpm以上 1 小時),然后真空干燥沉淀,備用。
4、上樣前加入裂解液,室溫放置 30 分鐘,使蛋白充分溶于裂解液中,然后離 心(15℃8000rpm 以上 1 小時或更長時間以沒有沉淀為標準),可臨時保存在 4℃待用。
5、用 Brandford 法定量蛋白,然后可分裝放入-80℃備用。
藥品:提取液:含 10%TCA 和 0.07%的β-巰基乙醇的丙酮
裂解液:2.7g 尿素 0.2gCHAPS 溶于 3ml 滅菌的去離子水中(終體積為 5ml),使用前再加入1M 的 DTT65ul/ml。這種方法針對雙向電泳,雜質少,離子濃度小的特點!當然單向電泳也同樣適用,只是電泳的條帶會減少!
三、組織:腸黏膜
目的:WESTERN BLOT 檢測凋亡相關蛋白的表達 應用 TRIPURE 提取蛋白質步驟:含蛋白質上清液中加入異丙醇:(1.5ml每1mlTRIPURE用量)倒轉混勻,置室溫 10min
離心:12000 g,10min,4 度,棄上清加入 0.3M 鹽酸胍/95%乙醇:(2ml 每 1mlTRIPURE 用量) 振蕩,置室溫 20min
離心:7500g,5 min,4 度,棄上清重復 0.3M 鹽酸胍/95%乙醇步 2 次沉淀中加入 100%乙醇 2ml 充分振蕩混勻,置室溫 20 min
離心:7500g,5min,4 度,棄上清吹干沉淀1%SDS 溶解沉淀 離心:10000g,10min,4 度取上清-20 度保存(或可直接用于WESTERN BLOT)
存在的問題:加入 1%SDS 后沉淀不溶解,還是很大的一塊,4 度離心后又多了 白色沉定,SDS 結晶測濃度,含量才1mg/ml左右。解決:提蛋白試劑盒,另外組織大小適中,要碎,立即加 2X BUFFER,然后煮5-10 分鐘,效果很好的。
四、植物材料:水稻苗,葉鞘,根
1、200 毫克樣品置于冰上磨碎
2、加 lysis buffer,離心,10000rpm,4 度,5min 取上清
3、重復離心 5min
lysis buffer:urea np-40 ampholine 2-me pvp-40
五、蛋白質樣品制備
秧苗蛋白質樣品的提取按 Davermal 等(1986)的方法進行。
100mg 材料剪碎后加入 10mgPVP-40(聚乙烯吡咯烷酮)及少量石英砂,用 液氮研磨成粉,加入 1.5 ml 10% 三氯乙酸(丙酮配制,含 10mM 即 0.07%β-巰基乙醇),混勻,-20℃沉淀 1 小時,4℃,15000 r/min 離心 15 min,棄上清, 沉淀復溶于 1.5ml 冷丙酮(含 10 mMβ-巰基乙醇),再于-20℃沉淀 1 小時,同上 離心棄上清,(有必要再用 80%丙酮(含 10 mMβ-巰基乙醇所得沉淀低溫冷凍真 空抽干。
按每mg干粉加入 20 μ l (可調)UKS液[9.5M尿素,5mM碳酸鉀,1.25%SDS,0.5%DTT(二硫蘇糖醇),2%Ampholine (Amersham Pharmacia Biotech Inc,pH3.5-10),6% Triton X-100],37℃溫育30min,期間攪動幾次,28度(溫度低,高濃度的尿素會讓溶液結冰)16000 r/min 離心15min,離心力越大時間長一點越好!上清即可上樣電泳。或者-70 度保存
六、植物根中蛋白質的抽取
(1) sample, 液氮研磨
(2) 裝 1.5 ml centrifuge 用 tube
(3) 加 1M KH2PO4+K2HPO4 700 ul
(4) 12000 rpm, 4 度, 10-15minite
(5) 取上層液,蛋白質就在里面
【中國糧油儀器在線】部分信息來自互聯網,力求安全及時、準確無誤,目的在于傳遞更多信息,并不代表本網對其觀點贊同或對其真實性負責。